土壤β-葡糖苷酶(β-glucosidase)活性测定常用比色法,以人工合成底物 对硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷(pNPG)为底物,在适宜条件下被酶水解生成黄色的对硝基苯酚(pNP),通过分光光度计测定其吸光度,从而计算酶活性。该方法操作简便、灵敏度高,是国际通用的标准方法之一。
1. 样品准备:
称取相当于1.0 g烘干土的新鲜土壤样品(精确到0.01g)于50mL三角瓶或离心管中。同时设置以下对照:
样品处理(3个重复): 土壤 + 底物缓冲液 → 测定酶活性。
土壤对照(3个重复): 土壤 + 等体积纯缓冲液(无底物) → 扣除土壤本身颜色或能释放PNP的物质。
基质对照: 无土壤,只有底物缓冲液 → 检查底物自身是否分解。
2. 酶促反应:
向样品处理组加入4 mL 0.05 M PNG缓冲液。
向土壤对照组加入4 mL 纯缓冲液。
将所有样品充分混匀后,塞紧瓶塞。
置于37℃恒温培养箱中,精确培养1小时。期间可间歇轻摇或置于振荡培养箱中。
3. 反应终止与显色:
培养结束后,立即向每个样品中加入 1 mL 0.5 M CaCl₂溶液 和 4 mL 0.5 M Tris-HCl缓冲液(pH 8),充分混匀以终止反应并创造碱性显色环境。
将反应液全部转移至离心管,在4℃下以约4000 rpm离心5分钟,获取上清液。
4. 比色测定:
将上清液小心倒入比色皿中。
用分光光度计在405 nm波长下测定其吸光度值(OD₄₀₅)。
以土壤对照组的平均吸光度值作为空白调零,读取样品处理组的吸光度值。
5. 标准曲线绘制:
用PNP标准溶液系列,加入与样品等量的终止/显色剂(1 mL CaCl₂ + 4 mL Tris),在405 nm下测定吸光度。
以PNP浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线,得到线性回归方程(y = ax + b)。
来源:网络
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